- Код статьи
- S3034614225050036-1
- DOI
- 10.7868/S3034614225050036
- Тип публикации
- Статья
- Статус публикации
- Опубликовано
- Авторы
- Том/ Выпуск
- Том / Номер выпуска 5
- Страницы
- 356-366
- Аннотация
- Изменение функциональной структуры сообществ под влиянием чужеродных растений – одно из важных, но недостаточно изученных последствий фитоинвазий. Проверяли предположение об изменении вероятности формирования микоризы у растений травяно-кустарничкового яруса под влиянием инвазии чужеродного клена ясенелистного (Acer negundo L.): одинаково или по-разному изменяется участие микоризных и немикоризных трав в сообществах в зависимости от степени доминирования A. negundo. Проанализировали результаты 118 геоботанических описаний, выполненных в Белорусском Полесье, Среднем Поволжье и на Среднем Урале. В каждом регионе описали сообщества с доминированием A. negundo и без него. Способность видов растений к микоризообразованию определили как непрерывно варьирующую величину вероятности формирования у вида микоризы на основании информации, представленной в базе FungalRoot Database. Соответственно анализировали микоризообразование как функциональный признак в понимании, используемом при анализе функционального разнообразия сообществ. Установили, что средневзвешенная вероятность формирования микоризы в сообществах с доминированием A. negundo ниже, чем в близких (аналогичных) сообществах, в которых доминировали другие виды древесных. Это указывает на упрощение структуры сообществ и замедление их сукцессионного развития под влиянием чужеродного клена ясенелистного. Полученные результаты подтверждают, что анализ функциональной структуры сообществ может быть полезным инструментом для улучшения понимания механизмов и условий, способствующих протеканию инвазий.
- Ключевые слова
- инвазия растений механизмы инвазий гипотеза деградировавшего мутуализма растительные сообщества типы почвенного питания растений функциональное разнообразие
- Дата публикации
- 05.03.2026
- Год выхода
- 2026
- Всего подписок
- 0
- Всего просмотров
- 29
Библиография
- 1. Aizen M., Torres A. The invasion ecology of mutualism // Annu. Rev. Ecol. Syst. 2024. V. 55. P. 41-63. https://doi.org/10.1146/annurev-ecolsys-102622-031210
- 2. Timbal J., Gelpe J., Garbaye J. Preliminary study on the effect of Molina caerulea on growth and mycorrhizal status of northern red oak (Quercus rubra) seedlings // Annales des Sciences Forestières. 1990. V. 47. № 6. P. 643-649. https://doi.org/10.1051/forest:19900609
- 3. Roberts K.J., Anderson R.C. Effect of garlic mustard [Alliaria petiolata (Beib. Cavara & Grande)] extracts on plants and arbuscular mycorrhizal (AM) fungi // Am. Midl. Nat. 2001. V. 146. № 1. P. 146-152. https://doi.org/10.1674/0003-0031 (2001)146[0146:EOGMAP]2.0.CO;2
- 4. Reinhart K.O., Callaway R.M. Soil biota and invasive plants // New Phytol. 2006. V. 170. P. 445-457. https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.2006.01715.x
- 5. Stinson K.A., Campbell S.A., Powell J.R. et al. Invasive plant suppresses the growth of native tree seedlings by disrupting belowground mutualisms // PLoS Biology. 2006. V. 4. № 5. Art. e140. https://doi.org/10.1371/journal.pbio.1001817
- 6. Barto E.K., Antunes P.M., Stinson K. et al. Differences in arbuscular mycorrhizal fungal communities associated with sugar maple seedlings in and outside of invaded garlic mustard forest patches // Biol. Invasions. 2011. V. 13. № 12. P. 2755-2762. https://doi.org/10.1007/s10530-011-9945-6
- 7. Cantor A., Hale A., Aaron J. et al. Low allelochemical concentrations detected in garlic mustard-invaded forest soils inhibit fungal growth and AMF spore germination // Biol. Invasions. 2011. V. 13. № 12. P. 3015-3025. https://doi.org/10.1007/s10530-011-9986-x
- 8. Cipollini D., Rigby C.M., Barto E.K. Microbes as targets and mediators of allelopathy in plants // J. Chem. Ecol. 2012. V. 38. № 6. P. 714-727. https://doi.org/10.1007/s10886-012-0133-7
- 9. Pakpour S., Klironomos J. The invasive plant, Brassica nigra, degrades local mycorrhizas across a wide geographical landscape // R. Soc. Open Sci. 2015. V. 2. Art. 150300. https://doi.org/10.1098/rsos.150300
- 10. Grove S., Haubensak K.A., Gehring C. et al. Mycorrhizae, invasions, and the temporal dynamics of mutualism disruption // J. Ecol. 2017. V. 105. № 6. P. 1496-1508. https://doi.org/10.1111/1365-2745.12853
- 11. Roche M.D., Pearse I.S., Sofaer H.R. et al. Invasion-mediated mutualism disruption is evident across heterogeneous environmental conditions and varying invasion intensities // Ecography. 2023. V. 7. Art. e06434. https://doi.org/10.1111/ecog.06434
- 12. Zhang Z., Liu Y., Brunel C. et al. Soil-microorganism-mediated invasional meltdown in plants // Nat. Ecol. Evol. 2020. V. 4. P. 1612-1621. https://doi.org/10.1038/s41559-020-01311-0
- 13. Dubrovin D.I., Veselkin D.V., Gusev A.P. Plants species richness and invasional meltdown in two different parts of Acer negundo secondary range // Forests. 2023. V. 14. № 11. Art. 2118. https://doi.org/10.3390/f1411218
- 14. Веселкин Д.В., Дубровин Д.И., Рафикова О.С. В сообществах с доминированием инвазионного дерева Acer negundo избирательно снижается встречаемость арбускулярно микроизных трав // Доклады РАН. Науки о жизни. 2024. Т. 518. С. 31-35.
- 15. Helsen K., Smith S.W., Brunet J. et al. Impact of an invasive alien plant on litter decomposition along a latitudinal gradient // Ecosphere. 2018. V. 9. № 1. Art. e02097. https://doi.org/10.1002/ecs2.2097
- 16. Sodhi D.S., Livingstone S.W., Carboni M., Cadotte M.W. Plant invasion alters trait composition and diversity across habitats // Ecol. Evol. 2019. V. 9. P. 6199-6210. https://doi.org/10.1002/ece3.5130
- 17. Helsen K., Van Cleemput E., Bassi L. et al. Inter- and intraspecific trait variation shape multidimensional trait overlap between two plant invaders and the invaded communities // Oikos. 2020. V. 129. P. 677-688. https://doi.org/10.1111/oik.06919
- 18. Forey E., Lodhar S., Gopaul S. et al. A functional trait-based approach to assess the impact of an alien palm invasion on plant and soil communities on a South Pacific island // Austral. Ecol. 2021. V. 4. P. 398-410. https://doi.org/10.1111/aec.12995
- 19. Guido A., Blanco C.C., Pillar V.D. Disentangling by additive partitioning the effects of invasive species on the functional structure of communities // J. Veg. Sci. 2021. V. 32. Art. e13004. https://doi.org/10.1111/jvs.13004
- 20. Milanović M., Kühn I., Pyšek P. et al. Functional diversity changes in native and alien urban flora over three centuries // Biol. Invasions. 2021. V. 23. P. 2337-2353. https://doi.org/10.1007/s10530-021-02509-4
- 21. Beck H.E., Zimmermann N.E., McVicar T.R. et al. Present and future Köppen-Geiger climate classification maps at 1-km resolution // Sci. Data. 2018. N. 5. Art. 180214. https://doi.org/10.1038/sdata.2018.214
- 22. Дубовик Д.В., Дмитриева С.А., Ламан Н.А. и др. Черная книга флоры Беларуси: чужеродные вредоносные растения. Национальная академия наук Беларуси; Институт экспериментальной ботаники им. В. Ф. Купревича. Минск: Беларуская навука, 2020. 407 с.
- 23. Plants of the World Online [Электронный ресурс]. URL: https://povo.science.kew.org/ (дата обращения - 19.01.2025).
- 24. Soudzilovskaja N.A., Vaessen S., Barcelo M. et al. Fungal Root: global online database of plant mycorrhizal associations // New Phytol. 2020. V. 227. N. 3. P. 955-966. https://doi.org/10.1111/nph.16569
- 25. Kalisz S., Kivlin S.N., Bialic-Murphy L. Allelopathy is pervasive in invasive plants // Biol. Invasions. 2021. V. 23. P. 367-371. https://doi.org/10.1007/s10530-020-02383-6
- 26. Casanovas F., Pla L., Di Rienzo J.A., Díaz S. Diversity: a software package for the integrated analysis of functional diversity // Methods Ecol. Evol. 2010. V. 2. N. 3. P. 233-237. https://doi.org/10.1111/j.2041-210X.2010.00082.x
- 27. Веселкин Д.В., Дубровин Д.И. Разнообразие травяного яруса урбанизированных сообществ с доминированием инвазивного Acer negundo // Экология. 2019. N. 5. C. 323-331.
- 28. Veselkin D.V., Dubrovin D.I., Pustovalova L.A. High canopy cover of invasive Acer negundo L. as a mechanism of its influence on ground cover plants // Sci. Rep. 2021. V. 11. N. 1. Art. 20758. https://doi.org/10.1038/s41598-021-00258-x
- 29. Wang B., Qiu Y.-L. Phylogenetic distribution and evolution of mycorrhizas in land plants // Mycorrhiza. 2006. V. 16. N. 5. P. 299-363. https://doi.org/10.1007/s00572-005-033-6
- 30. Van Der Heijden M.G.A., Bardgett R.D., Van Straalen N.M. The unseen majority: soil microbes as drivers of plant diversity and productivity in terrestrial ecosystems // Ecol. Lett. 2008. V. 11. P. 296-310. https://doi.org/10.1111/j.1461-0248.2007.01139.x
- 31. Bennett J., Cahill J. Fungal effects on plant-plant interactions contribute to grassland plant abundances: evidence from the field // J. Ecol. 2016. V. 104. P. 755-764. https://doi.org/10.1111/1365-2745.12558
- 32. Vogelsang K.M., Bever J.D. Mycorrhizal densities decline in association with nonnative plants and contribute to plant invasion // Ecology. 2009. V. 90. N. 2. P. 399-407. https://doi.org/10.1890/07-2144.1
- 33. Веселкин Д.В., Рафикова О.С., Екишбаров Е.Д. Почва из зарослей инвазивного Acer negundo неблагоприятна для образования микоризы у аборигенных трав // Журнал общ. биол. 2019. T. 80. N. 3. C. 214-225.
- 34. Jumpponen A., Trappe J.M., Cazares E. Occurrence of ectomycorrhizal fungi on the forefront of retreating Lyman Glacier (Washington, USA) in relation to time since deglaciation // Mycorrhiza. 2002. V. 12. N. 1. P. 43-49. https://doi.org/10.1007/s00572-001-0152-7
- 35. Lambers H., Raven J.A., Shaver G.R., Smith S.E. Plant nutrient-acquisition strategies change with soil age // Trends Ecol. Evol. 2008. V. 23. N. 2. P. 95-103. https://doi.org/10.1016/j.tree.2007.10.008
- 36. Веселкин Д.В. Участие растений разного микротюфного статуса в сукцессии при формировании "агростепи" // Экология. 2012. N. 4. C. 270-275.
- 37. Веселкин Д.В., Лукина Н.В., Чибрик Т.С. Соотношение микоризных и меникоризных видов растений в первичных техногенных сукцессиях // Экология. 2015. N. 5. C. 417-424
- 38. Veselkin D.V., Kupriyanov A.N., Manakov Ju.A. et al. Mycorrhizal plants' accelerated revegetation on coal mine overburden in the dry steppes of Kazakhstan // Environmental Sustainability: Role of Green Technologies. P. Thangavel and G. Sridevi (eds.). Springer India, 2015. P. 265-282. https://doi.org/10.1007/978-81-322-2056-5_16
- 39. Fike J., Niering W.A. Four decades of old field vegetation development and the role of Celastrus orbiculatus in the Northeastern United States // J. Veg. Sci. 1999. V. 10. N. 4. P. 483-492. https://doi.org/10.2307/3237183
- 40. Gusev A.P. The impact of invasive canadian goldenrod (Solidago canadensis L.) on regenerative succession in old fields (the Southeast of Belarus) // Russ. J. Biol. Invasions. 2015. V. 6. № 2. P. 74-77. https://doi.org/10.1134/S2075111715020034
- 41. Zadworny M., Eisenstat D.M. Contrasting the morphology, anatomy and fungal colonization of new pioneer and fibrous roots // New Phytol. 2011. V. 190. № 1. P. 213-221. https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.2010.03598.x
- 42. Kovacs G.M., Szigetvari C. Mycorrhizae and other root-associated fungal structures of the plants of a sandy grassland on the Great Hungarian Plain // Phytol. 2002. V. 42. № 2. P. 211-223.
- 43. Веселкин Д.В., Прокина Н.Э. Микоризообразование у клена ясенелистного (Acer negundo L.) в градиенте урбанизации // Российский журн. биологич. инвазий. 2016. № 1. С. 31-40.
- 44. Веселкин Д.В., Пьянков С.В., Сафонов М.А. и др. Строение поглощающих корней инвазивного и аборигенных видов клена // Экология. 2017. № 4. С. 241-249.
- 45. Konvalinkov T., Jansa J. Lights off for arbuscular mycorrhiza: on its symbiotic functioning under light deprivation // Front. Plant Sci. 2016. V. 7. P. 1-11. https://doi.org/10.3389/fpls.2016.00782
- 46. Веселкин Д.В., Дубровин Д.И., Рафикова О.С. и др. Затенение и перехват света в зарослях инвазионных видов Acer negundo и Sorbaria sorbifolia // Российский журн. биологич. инвазий. 2021. № 4. С. 30-42.
- 47. Бетехтина А.А., Веселкин Д.В. Распространенность и интенсивность микроизообразования у травянистых растений Среднего Урала с разными типами экологических стратегий // Экология. 2011. № 3. С. 176-183.